Wumba Roger ¹, Longo Mbenza Benjamin ², Menotti Jean³, Mandina Madone⁴, Kintoki Fabien⁴, Zanga Josue¹, Banzulu-Makola¹, Nseka Tommy ¹, Mukendi Jean Pierre ¹, Ngatu Nlandu Roger⁵, Kendjo Eric⁶, Sala Jean ¹, Thellier Marc⁶-⁷, Michel Aloni8, Lokotola Lueme Christian2 , Teke Apalata2 , Rhenazo Andre6 , Kensense Mossanda2
1. Département de Médecine Tropicale, Maladies Infectieuses et Parasitaires, Service de parasitologie, Cliniques Universitaires de Kinshasa, Faculté de Médecine, Université de Kinshasa ; Department of Tropical Medicine, Infectious and Parasitic Diseases, Department of Parasitology, University Clinic of Kinshasa, Faculty of Medicine, University of Kinshasa;
2. Département de Médecine Interne, Service de cardiologie et de Physiopathologie, Cliniques Universitaires de Kinshasa, Faculté de Médecine, Université de Kinshasa ; Faculty of Health Sciences, Walter Sisulu University, Mthatha, Private Bag XI, Mthatha 5117, Eastern Cape, South Africa.;
3. AP-HP, Hôpital Saint Louis, Service de Parasitologie mycologie à Paris. Laboratory of Parasitology and Mycology, Hôpital Saint-Louis, Assistance Publique-Hôpitaux de Paris, and Faculté´ de Médecine Lariboisière-Saint-Louis, Université Paris VII, Paris, France
4. Department of Centre National de Recherche sur le Paludisme, AP-HP, CHU Pitié Salpêtrière, UMR-S 945 INSERM/Paris 6, Boulevard de l’Hôpital, Paris, France. Medicine Interne, University Clinic of Kinshasa, Faculty of Medicine, University of Kinshasa;
5. Environmental/Occupation Skin and Lung Disorders, Department of Environmental Medicine, Kochi University Medical School, Kochi, Japan.
6. National Center for Malaria Research, AP-HP, CHU Pitie Salpêtrière, INSERM UMR-S 945 / Paris 6, Boulevard de l’Hôpital, Paris, France.
7. AP-HP, Groupe hospitalier Pitié-Salpêtrière, Service de Parasitologie-Mycologie, Université Pierre et Marie Curie, UMR-S 945 INSERM/Paris 6, Boulevard de l’Hôpital, Paris, France.AP-HP, Groupe Hospitalier Pitié-Salpêtrière Hospital, Department of Parasitology-Mycology, Université Pierre et Marie Curie, INSERM UMR-S 945 / 6 Paris, Boulevard de l’Hôpital, Paris, France.
8. Department of Pediatrics, Cliniques Universitaires de Kinshasa, Faculté de Médecine, Université de Kinshasa.
J. innov. res. health sci. biotechnol. 2016; 1(4): 195 – 203.
doi: 10.18644/jiresh-biotech.0000021
ABSTRACT
The objective of this cross-sectional study was to determine the prevalence of gastro-intestinal parasites in 53 bonobos, captives in Lola Sanctuary, Kinshasa region, DR Congo. Microscopic analysis of faeces, IFI-Mab, extraction of DNA products, real-time PCR, nested PCR-RFLP, PCR amplification and RFLP were used for the identification of Ascaris lumbricoïdes ,microsporidia and Cryptosporidium hominis. The prevalence of Ascaris lumbricoïdes ,microsporidia and Cryptosporidium hominis was 90.4%, 0% and 1.8% respectively. The molecular analyses displayed suitable results and were found to be sensitive and specific tools for routine diagnosis and genotyping of microsporidia and Cryptosporidium in stools obtained from bonobos. Ascaris lumbricoïdes and C. Hominis from bonobos can be potential sources of infections for humans, promting appropriate preventive measures.
Key words: Cryptosporidium hominis, Ascaris lumbricoïdes , Bonobo, molecular analyses, Central Africa.
RÉSUMÉ
L’objectif de cette étude transversale était de déterminer la prévalence de parasites gastro-intestinaux chez les 53 bonobos, captifs dans Lola Sanctuary, région de Kinshasa, RD Congo. Les analyses microscopiques de matières fécales, IFI-Mab, extractions de produits d’ADN, PCR en temps réel, nested PCR-RFLP, amplification par PCR et RFLP ont été utilisés pour l’identification des Ascaris lumbricoïdes, microsporidies et Cryptosporidium hominis. La prévalence de l’Ascaris lumbricoïdes, microsporidies et Cryptosporidium hominis a été de 90,4 %, 0 % et 1,8 % respectivement. Les analyses moléculaires affichent des résultats appropriés et se sont révélés sensibles et spécifiques comme outils de diagnostic systématique et pour génotypage des microsporidies et Cryptosporidium dans les selles provenant des bonobos.Ascaris lumbricoïdes et C. Hominis colonisant les bonobos peuvent être des sources potentielles d’infection pour l’homme, exigeant ainsi les mesures de prévention appropriées afin d’eviter les contaminations.
Mots clés : Cryptosporidium hominis, Ascaris lumbricoïdes , Bonobo, analyses moleculaires, Africa central.
